עיבוד RNA בזמן שעתוק

בשיעורים הקודמים הוגדרו שלושה פולימראזות עיקריים בגרעין האאוקריוטי: RNA Polymerase I, RNA Polymerase II ו־RNA Polymerase III. בשיעור הנוכחי נתמקד במה שקורה ל־RNA לאחר שהוא מתחיל להיווצר, ובפרט בעיבודו עד לקבלת המבנה הבוגר והפעיל שלו.

מבט כללי על עיבוד RNA: בזמן השעתוק ואחריו מתווספים ל־RNA רכיבים שונים, אינטרונים מוסרים, וקצוות ה־RNA מעובדים.

כל סוג RNA עובר עיבוד אחר:

סוג RNA פולימראז עיקרי עיבוד עיקרי
mRNA Pol II 5′ capping, polyadenylation, splicing, מודיפיקציות ובקרת איכות
rRNA בעיקר Pol I, ובנוסף Pol III עבור 5S rRNA חיתוך של precursor ארוך, מודיפיקציות והרכבה עם חלבונים ריבוזומליים
tRNA Pol III חיתוך קצוות, הוספת CCA, מודיפיקציות רבות וקיפול למבנה תלתני

ב־mRNA, העיבוד קשור מאוד לשעתוק עצמו. הזנב CTD של Pol II מגייס חלבונים שמבצעים capping, splicing ו־polyadenylation בזמן שה־RNA עדיין יוצא מהפולימראז. לכן השעתוק והעיבוד מתרחשים במקביל ומשפיעים זה על זה.


עיבוד mRNA: שלושת השלבים העיקריים

תעתיק ראשוני של גן המקודד לחלבון נקרא pre-mRNA. הוא כולל אקסונים, אינטרונים וקצוות שעדיין צריכים לעבור עיבוד. כדי להפוך ל־mRNA בוגר, הוא עובר שלושה תהליכים עיקריים:

5′ capping → splicing → polyadenylation
תהליך מה קורה בו למה הוא נדרש
5′ capping הוספת cap של 7-methylguanosine בקצה 5′ יציבות, יציאה מהגרעין, התחלת תרגום
Splicing הוצאת אינטרונים וחיבור אקסונים יצירת מסגרת קריאה תקינה
Polyadenylation חיתוך קצה 3′ והוספת זנב Poly-A יציבות, יציאה מהגרעין, תרגום ובקרה על אורך חיי ה־mRNA

בנוסף לשלושת התהליכים האלה, mRNA יכול לעבור מודיפיקציות כימיות על גבי הנוקלאוטידים עצמם. אלה שינויים בתעתיק עצמו, ולא “תוספת קצה” כמו cap או Poly-A.

שני גנים אנושיים שממחישים את היחס בין אקסונים ואינטרונים: β-globin הוא גן קצר יחסית, ואילו Factor VIII ארוך בהרבה וכולל מספר רב של אקסונים ואינטרונים.

בדוגמה מהמצגת רואים את ההבדל בין גן קצר כמו β-globin, שיש בו מעט אקסונים ואינטרונים, לבין גן ארוך כמו Factor VIII, שיש בו 26 אקסונים ו־25 אינטרונים. ככל שיש יותר אינטרונים, תהליך ה־splicing נעשה חשוב יותר ליצירת mRNA מדויק.

למבחן: אם גן מכיל אינטרון, האינטרון צריך לצאת החוצה. ללא splicing תקין, מסגרת הקריאה עלולה להשתבש, עלול להיווצר stop codon מוקדם, או שעלול להיווצר mRNA שיישלח לפירוק.


5′ capping

5′ cap הוא גואנוזין שעבר מתילציה, המחובר לנוקלאוטיד הראשון של ה־RNA בקשר הפוך וייחודי: 5′-to-5′ triphosphate linkage. הקשר הזה שונה מהקשרים הרגילים בתוך RNA, שבהם נוקלאוטיד אחד מחובר לנוקלאוטיד הבא בכיוון 5′←3′ (חמש לשלוש).

ה־cap מתווסף בתחילת ההתארכות של Pol II, כאשר ה־RNA החדש כבר יצא מעט מהפולימראז. בשלב הזה חלבונים שקשורים ל־CTD ול־SPT5 מגייסים את פקטורי ה־capping.

מנגנון הוספת 5′ cap: הסרת פוספט מקצה ה־RNA, הוספת GMP בקשר 5′-to-5′, ואז מתילציה של הגואנין ושל הריבוז הראשון.

שלושת האנזימים של capping

שלב אנזים פעולה
1 RNA 5′ triphosphatase מוריד פוספט אחד מקצה 5′ של ה־pre-mRNA
2 Guanylyltransferase (GT) מחבר GMP לקצה ה־RNA בקשר 5′-to-5′
3 Methyltransferase (MT) מוסיף מתיל ל־G שנוסף, ולעיתים גם לריבוז של הנוקלאוטיד הראשון

בשלב השני, האנזים משתמש ב־GTP. הוא מסיר ממנו שני פוספטים, כך שנשאר GMP, ומחבר אותו ל־RNA. לאחר מכן מתווספות קבוצות מתיל, ולכן ה־cap הבוגר נקרא בדרך כלל m⁷G cap.

תפקידי ה־cap

תפקיד הסבר
הגנה מפירוק קצה RNA חשוף יכול לעבור דגרדציה; ה־cap מגן על קצה 5′
יציאה מהגרעין חלבוני cap-binding מזהים RNA שעבר capping ועוזרים לו לעבור דרך ה־nuclear pore
תחילת תרגום בציטופלזמה, פקטורי התחלת תרגום מזהים את ה־cap ומגייסים את הריבוזום

למבחן: cap הוא לא רק סימון דקורטיבי בקצה ה־RNA. הוא משתתף ביציבות, export ותרגום. mRNA ללא cap תקין צפוי להיות פחות יציב ולעבור בקרה/פירוק.


מודיפיקציות על mRNA

מעבר ל־cap, התעתיק עצמו יכול לעבור מודיפיקציות כימיות. חלק מהן מתווספות תוך כדי שעתוק וחלק לאחר השעתוק. בשיעור לא נדרש לזכור את כל סוגי המודיפיקציות בעל פה, אבל כן חשוב להכיר את העיקרון: שינוי קטן בבסיס או בריבוז יכול להשפיע על יציבות RNA, splicing, export ותרגום.

מיקום מודיפיקציות נפוצות על mRNA: חלק מהמודיפיקציות שכיחות באזור 5′ UTR, חלק באזור coding sequence וחלק באזור 3′ UTR.

דוגמאות:

מודיפיקציה מה משתנה מאפיינים כלליים
m⁶A מתילציה בעמדה 6 של אדנין אחת המודיפיקציות הידועות ב־mRNA; קשורה ליציבות, splicing, export ותרגום
m⁶Am מודיפיקציה דומה, לעיתים סמוכה ל־cap קשורה בין היתר ליציבות ותרגום
Pseudouridine (Ψ) שינוי בקישור של uridine לריבוז, כך שהקשר עובר דרך פחמן מופיעה גם ב־rRNA וב־tRNA; קשורה ליציבות וקיפול RNA
m⁵C, m¹A ועוד מתילציות בעמדות שונות חלק ממערך רגולציה רחב של RNA

המיקום של מודיפיקציה והאם היא תתווסף לתעתיק מסוים תלויים בהקשר התאי. אותו mRNA יכול לעבור מודיפיקציה בתנאי תא אחד ולא לעבור אותה בתנאי אחר. כך התא יכול להשפיע על אורך חיי ה־RNA, על יציאתו מהגרעין ועל יעילות התרגום שלו.


Polyadenylation וזנב Poly-A

Polyadenylation הוא תהליך עיבוד קצה 3′ של mRNA. בניגוד ל־cap, שנוסף לקצה 5′, כאן התא קובע היכן לחתוך את ה־RNA בקצה 3′ ומוסיף אחר כך זנב ארוך של אדנינים.

האותות שמגדירים את אזור החיתוך וה־polyadenylation מקודדים ב־DNA, אבל הם מזוהים לאחר שהם כבר שועתקו ל־RNA. הרצף המרכזי הוא PAS - Polyadenylation Signal, ובדרך כלל מופיע בו המוטיב AAUAAA.

מנגנון polyadenylation: CPSF ו־CstF מזהים רצפים על ה־RNA, מתבצע cleavage, PAP מוסיף את זנב ה־Poly-A, ו־PABPs נקשרים לזנב וקובעים את אורכו.

רצף האירועים

שלב מה מתרחש
1 Pol II עובר על אזור PAS בקצה 3′ של הגן
2 חלבוני CPSF ו־CstF, כחלק מ־CPA complex, עוברים מה־CTD אל ה־RNA
3 קומפלקס העיבוד מגייס חלבונים נוספים ומבצע cleavage של ה־RNA
4 Poly-A Polymerase (PAP) מוסיף נוקלאוטידי A לקצה החדש
5 Poly-A-binding proteins (PABPs) נקשרים לזנב ומסייעים לקבוע את אורכו

PAP אינו משתמש בתבנית DNA. לכן זנב ה־Poly-A עצמו אינו מקודד ישירות בגנום. הוא מתווסף לאחר החיתוך, בעזרת ATP, ובדרך כלל מגיע לאורך של בערך 200 נוקלאוטידים.

תפקידי Poly-A

תפקיד הסבר
יציבות ככל שהזנב ארוך יותר, לרוב ה־mRNA יציב יותר; בציטופלזמה הזנב מתקצר בהדרגה
יציאה מהגרעין PABPs וחלבונים נוספים עוזרים ל־mRNA לעבור export
תרגום בציטופלזמה זנב Poly-A משתתף בהתחלת תרגום דרך אינטראקציות עם פקטורי תרגום

למבחן: רצף ה־PAS מקודד ב־DNA ומופיע ב־RNA, אבל זנב ה־Poly-A עצמו נוסף אחרי cleavage ואינו מועתק מתבנית DNA.


Splicing: הוצאת אינטרונים וחיבור אקסונים

Splicing הוא התהליך שבו אינטרונים מוסרים מתוך pre-mRNA, ואקסונים סמוכים מחוברים זה לזה. התוצר הוא mRNA בוגר שבו רצפי האקסונים מסודרים ברצף המתאים למסגרת הקריאה.

השוואה בין גן קצר וגן ארוך: ככל שיש יותר אינטרונים, נדרשים יותר אירועי splicing כדי ליצור mRNA בוגר.

האנזים-קומפלקס שמבצע את הספלייסינג נקרא spliceosome. הוא מורכב מ־RNA וחלבונים, ולכן מזכיר מבחינה רעיונית קומפלקסים כמו הריבוזום: לא מדובר רק בחלבון אחד שמבצע תגובה, אלא במכונה מולקולרית גדולה ודינמית.

סכמה כללית של splicing: ה־spliceosome מזהה את האינטרון, מקרב את האקסונים, מוציא את האינטרון כ־lariat ומחבר את האקסונים ל־mRNA בוגר.

ה־spliceosome מבצע שלוש פעולות עיקריות:

  1. מזהה את גבולות האינטרון.
  2. מקרב את האקסון שלפני האינטרון לאקסון שאחריו.
  3. מוציא את האינטרון ומחבר את האקסונים.

התהליך מתרחש במקרים רבים תוך כדי שעתוק. Pol II ממשיך לסנתז RNA, ובמקביל חלבוני splicing מגויסים לתעתיק החדש, בין היתר דרך ה־CTD.


רצפי ההכרה של הספלייסינג

כדי להוציא את האינטרון במקום הנכון, התא צריך לזהות שלושה אזורים ב־pre-mRNA:

אזור מיקום מאפיין רצפי
5′ splice site תחילת האינטרון לרוב מתחיל ב־GU
Branch point בתוך האינטרון, קרוב יותר לקצה 3′ כולל אדנוזין חשוב (A)
3′ splice site סוף האינטרון לרוב מסתיים ב־AG; לפניו אזור עשיר בפירימידינים, בעיקר C ו־U

הרצף הכללי:

AG|GUAAGU.............CU(A)AC........YYYYYY....AG|G

הסימון Y מציין פירימידין, כלומר C או U. האדנוזין ב־branch point הוא זה שייצור בהמשך את מבנה ה־lariat.

למבחן: GU בתחילת האינטרון, AG בסופו, ו־A ב־branch point. אלה שלושת האזורים שמכוונים את ה־spliceosome למקום הנכון.


הרכבת ה־spliceosome

ה־spliceosome בנוי מ־snRNPs - small nuclear ribonucleoproteins. כל snRNP כולל snRNA וחלבונים. חמשת ה־snRNPs העיקריים הם:

snRNP תפקיד
U1 נקשר ל־5′ splice site
U2 נקשר ל־branch point לאחר BBP ו־U2AF
U4 מעכב זמנית את U6, כדי שהפעילות הקטליטית לא תתרחש מוקדם מדי
U5 מקרב וממקם את שני האקסונים לקראת החיבור
U6 משתתף בליבה הקטליטית של ה־spliceosome, יחד עם U2 ו־NTC/NTR

בנוסף ל־snRNPs יש חלבונים נוספים:

חלבון / קומפלקס תפקיד
BBP - Branch-point Binding Protein מזהה את ה־branch point בתחילת ההרכבה
U2AF - U2 Auxiliary Factor נקשר לאזור ה־polypyrimidine tract ול־3′ splice site, ועוזר לגייס U2
NTC/NTR משתתפים ביצירת המצב הקטליטי הפעיל של ה־spliceosome
EJC - Exon Junction Complex מתווסף לאחר splicing באזור חיבור אקסון-אקסון ומשמש לבקרה בהמשך

סדר ההרכבה

שלבי הרכבת ה־spliceosome: U1 מזהה את 5′ splice site, BBP/U2AF מזהים את הקצה השני, U2 מחליף אותם ב־branch point, ואחר כך מצטרפים U4/U6 ו־U5.
  1. U1 נקשר ל־5′ splice site.
  2. BBP ו־U2AF נקשרים באזור ה־branch point וה־3′ splice site.
  3. U2 מחליף את BBP/U2AF ונקשר ל־branch point.
  4. קומפלקס U4/U6 ו־U5 מצטרף.
  5. U5 מקרב את האקסונים.
  6. U1 ו־U4 עוזבים. U4 מפסיק לעכב את U6.
  7. U6 נקשר מחדש באזור 5′ ויוצר יחד עם U2 את הליבה הקטליטית.
  8. NTC/NTR מייצבים את המצב הפעיל ומאפשרים את תגובות החיתוך.

ה־ATP משמש בעיקר לשינויי קונפורמציה, לפירוק והרכבה מחדש של אינטראקציות RNA-RNA ו־RNA-חלבון, ולמיחזור רכיבי ה־spliceosome.


שתי תגובות החיתוך וה־lariat

לאחר שה־spliceosome פעיל, מתרחשות שתי תגובות עיקריות:

השלבים הקטליטיים של splicing: יצירת lariat, חיתוך קצה 3′ של האינטרון, חיבור האקסונים והוספת EJC באזור החיבור.
תגובה מה קורה
תגובה ראשונה קצה 5′ של האינטרון נחתך. האדנוזין ב־branch point נקשר לקצה האינטרון ויוצר מבנה lariat
תגובה שנייה קצה 3′ של האינטרון נחתך, שני האקסונים מחוברים, והאינטרון יוצא כ־lariat

לאחר החיבור, האינטרון בצורת lariat יפורק בגרעין. רכיבי ה־spliceosome ממוחזרים לשימוש נוסף. באזור החיבור בין שני האקסונים מתווסף EJC, שישמש בהמשך לבקרה על mRNA שעבר splicing.

למבחן: ה־spliceosome אינו רק “מקרב אקסונים”. הוא מזהה splice sites, יוצר ליבה קטליטית עם U2/U6, מבצע שתי תגובות חיתוך, מוציא lariat ומסמן את חיבור האקסונים בעזרת EJC.


Alternative splicing

ב־alternative splicing, אותו גן יכול ליצור כמה mRNAs שונים. ההבדל בין ה־mRNAs נובע מבחירה שונה של אקסונים שייכללו בתעתיק הבוגר.

Alternative splicing בגן α-tropomyosin: אותו גן יכול ליצור mRNAs שונים בתאי שריר משורטט, שריר חלק, פיברובלסטים ותאי מוח.

בדוגמה של α-tropomyosin, אותו גן עובר splicing בצורות שונות בתאים שונים:

  • תעתיק אחד מתאים לסוגי שריר מסוימים.
  • תעתיק אחר מתאים לשריר חלק.
  • תעתיקים אחרים נוצרים בפיברובלסטים או בתאי מוח.

כך התא יכול להשתמש באותו גן כדי לייצר איזופורמים שונים של חלבון. זה חוסך צורך בגן נפרד לכל וריאציה של חלבון, ומאפשר התאמה לרקמה, לשלב התפתחותי או למצב פיזיולוגי.

Alternative splicing יכול לכלול:

סוג שינוי תיאור
Exon skipping אקסון מסוים מדולג ולא נכנס ל־mRNA הבוגר
Alternative 5′ splice site שימוש בנקודת חיתוך אחרת בתחילת אינטרון
Alternative 3′ splice site שימוש בנקודת חיתוך אחרת בסוף אינטרון
Alternative polyadenylation שימוש באתר poly-A שונה, ולכן קצה 3′ שונה

הבחירה בין אפשרויות splicing מושפעת מרצפי RNA ומחלבוני בקרה שנקשרים אליהם. רצפי splice חזקים מזוהים ביעילות גבוהה יותר, ורצפים חלשים תלויים יותר בפקטורי בקרה.


בקרת איכות, יציאה מהגרעין ו־NMD

mRNA בוגר אינו יוצא מהגרעין רק מפני שהוא סונתז. עליו לשאת סימנים שמראים שהוא עבר עיבוד תקין: cap, זנב Poly-A עם PABPs, חלבונים שנקשרים בזמן splicing, וחלבוני export.

בקרת איכות בגרעין: mRNA שעבר עיבוד תקין נקשר לחלבונים שמאפשרים export, ואילו RNA לא תקין יכול להישלח לפירוק על ידי exosome.

יציאה מהגרעין או פירוק

מצב ה־RNA גורל
mRNA עם cap, Poly-A, PABPs וחלבוני עיבוד מתאימים עובר export לציטוזול
RNA לא מעובד או פגום נשמר בגרעין ונשלח לפירוק
שברי RNA, אינטרונים, תעתיקים לא בשלים מפורקים בגרעין, בין היתר על ידי nuclear RNA exosome

Nuclear RNA exosome

ה־nuclear RNA exosome הוא קומפלקס חלבוני גדול שמפרק RNA בגרעין. הוא בנוי כמעין תעלה/חבית חלבונית: RNA נכנס אל הקומפלקס, מגיע לתת־יחידות קטליטיות בעלות פעילות RNase, ומתפרק לנוקלאוטידים.

מבנה סכמטי של nuclear RNA exosome: קומפלקס טבעתי שמוביל RNA אל תתי-יחידות קטליטיות המפרקות אותו.

ה־exosome מפרק בין היתר:

  • אינטרונים שנחתכו החוצה.
  • RNAs לא בשלים.
  • שברי RNA.
  • תעתיקים שלא עברו עיבוד תקין.

Nonsense-mediated decay (NMD)

גם אחרי export לציטוזול יש בקרת איכות. אחת הבקרות שנלמדו היא Nonsense-mediated decay, או NMD. היא מזהה mRNA שבו יש stop codon מוקדם, מצב שעלול ליצור חלבון קצר ולא תקין.

NMD: במסלול תקין הריבוזום מסיר EJCs בזמן סריקה ראשונה של ה־mRNA. אם יש stop codon מוקדם, EJC נשאר downstream ומגייס חלבוני Upf שמובילים לפירוק ה־mRNA.

הרעיון:

  1. לאחר splicing, אזורי חיבור אקסון-אקסון מסומנים על ידי EJC.
  2. לאחר export, ריבוזום מבצע סריקה/תרגום ראשון של ה־mRNA.
  3. אם מסגרת הקריאה תקינה, הריבוזום עובר לאורך ה־mRNA ומסיר את ה־EJCs.
  4. אם יש stop codon מוקדם, הריבוזום נעצר לפני שהוא הסיר EJC שנמצא downstream.
  5. EJC שנשאר על mRNA אחרי עצירה מוקדמת מגייס חלבוני Upf ומפעיל פירוק של ה־mRNA.

למבחן: EJC הוא סימן לכך שהתרחש splicing באזור מסוים. ב־NMD, EJC שנשאר אחרי stop codon מוקדם משמש כסימן ל־mRNA בעייתי.


עיבוד rRNA והרכבת ריבוזומים

החלק השני של השיעור עובר ל־rRNA. בשיעור הקודם נלמד ש־Pol I מסנתז precursor ארוך של rRNA בגרעינון. בשיעור הזה הושלם מה קורה ל־precursor הזה לאחר השעתוק.

מה־47S precursor ל־rRNA בוגר

Pol I מסנתז 47S pre-rRNA. התעתיק הזה כולל את הרצפים שמהם ייווצרו:

  • 18S rRNA - חלק מהתת־יחידה הקטנה של הריבוזום.
  • 5.8S rRNA - חלק מהתת־יחידה הגדולה.
  • 28S rRNA - חלק מהתת־יחידה הגדולה.

בין הרצפים האלה נמצאים spacers:

Spacer מיקום מה קורה לו
5′ ETS בתחילת התעתיק מוסר בשלבי העיבוד הראשונים
ITS1 בין 18S לבין 5.8S מוסר בחיתוכים פנימיים
ITS2 בין 5.8S לבין 28S מוסר בחיתוכים פנימיים
3′ ETS בסוף התעתיק מוסר בשלבי העיבוד

חשוב להבדיל בין spacers ב־rRNA לבין אינטרונים ב־mRNA. כאן מדובר באזורים שנמצאים בתוך precursor של rRNA ומוסרים בתהליך עיבוד ריבוזומלי.

עיבוד 47S pre-rRNA: ה־ETS וה־ITS מוסרים בשלבי cleavage רבים, ובסוף מתקבלים 18S, 5.8S ו־28S rRNA.

רצף העיבוד:

47S pre-rRNA45S לאחר הסרת ETSחיתוך בין 18S ל־5.8S/28S18S לתתי-יחידה קטנה5.8S + 28S לתתי-יחידה גדולה

ה־18S עובר מסלול עיבוד שמוביל לתת־היחידה הקטנה 40S. ה־5.8S וה־28S מעובדים יחד עם 5S rRNA, שמיוצר על ידי Pol III, ויחד הם משתתפים ביצירת התת־יחידה הגדולה 60S.

מודיפיקציות rRNA

rRNA מכיל הרבה מודיפיקציות. שתי מודיפיקציות שהוזכרו במיוחד:

מודיפיקציה מה משתנה תפקיד כללי
2′-O-methylation מתילציה על הריבוז ייצוב מבנה RNA וסיוע בבניית ריבוזום תקין
Pseudouridylation uridine הופך ל־pseudouridine קיפול נכון ויציבות rRNA

מודיפיקציות rRNA חשובות לקיפול, יציבות והרכבת ריבוזום פעיל. הן מתרחשות כחלק מתהליך הביוגנזה של הריבוזום בגרעינון.

הרכבת הריבוזום דורשת את שלוש הפולימראזות

ביוגנזה של ריבוזום: Pol I מסנתז pre-rRNA, Pol III מסנתז 5S rRNA, ו־Pol II מסנתז mRNAs לחלבוני הריבוזום ול־snoRNAs. החלבונים מתורגמים בציטופלזמה וחוזרים לגרעינון להרכבה.

הרכבת הריבוזום משלבת כמה מקורות:

מקור תרומה לריבוזום
Pol I מסנתז את 47S pre-rRNA, שממנו נוצרים 18S, 5.8S ו־28S
Pol III מסנתז 5S rRNA
Pol II מסנתז mRNAs לחלבוני הריבוזום וגם RNAs רגולטוריים כמו snoRNAs

חלבוני הריבוזום מסונתזים בציטופלזמה, כי הם תוצרי תרגום של mRNAs. לאחר מכן הם חוזרים לגרעין בעזרת NLS - Nuclear Localization Signal, מגיעים לגרעינון, ונקשרים ל־rRNA תוך כדי עיבודו.

הריבוזום אינו יוצא מהגרעין כ־rRNA חופשי. תתי-היחידות נבנות בהדרגה בגרעינון, עוברות שלבי maturation נוספים, ואז יוצאות בנפרד לציטופלזמה. שם, בזמן תרגום, תת־היחידה הקטנה ותת־היחידה הגדולה מתחברות על גבי mRNA.


עיבוד tRNA

החלק האחרון של השיעור עוסק ב־tRNA. Pol III מסנתז pre-tRNA, שאינו מוכן מיד לתרגום. כדי להפוך ל־tRNA בוגר הוא צריך לעבור חיתוך קצוות, הוספת CCA ומודיפיקציות רבות.

עיבוד tRNA: חיתוך קצה 5′ על ידי RNase P, עיבוד קצה 3′, והוספת CCA בקצה 3′ על ידי CCA enzyme.

שלבי עיבוד tRNA

שלב מה קורה
חיתוך 5′ leader RNase P חותך את הקצה 5′ של pre-tRNA
עיבוד 3′ trailer אנדונוקלאזות ואקסונוקלאזות מסירות רצפים עודפים בקצה 3′
הוספת CCA אנזים CCA מוסיף את הרצף CCA לקצה 3′
מודיפיקציות כימיות בסיסים שונים ב־tRNA עוברים שינוי כימי, בעיקר לצורך יציבות וקריאת קודונים

רצף CCA בקצה 3′ הוא אתר הקישור של חומצת האמינו. לכן הוא חיוני לתפקיד של tRNA בתרגום. האנזים שמוסיף אותו אינו צריך תבנית DNA; הוא מוסיף C, C ואז A בצורה אנזימטית.

למבחן: CCA הוא חלק חיוני מה־tRNA הבוגר כי אליו תיקשר חומצת האמינו. במקרים רבים, הוא נוסף אחרי השעתוק ולא מקודד ישירות ברצף הגן.

מודיפיקציות tRNA

tRNA הוא אחד מסוגי ה־RNA שעוברים הכי הרבה מודיפיקציות. חלקן עוזרות לייצב את המבנה התלתני, וחלקן משפיעות על זיהוי קודון-אנטיקודון.

מפת מודיפיקציות על tRNA: מודיפיקציות רבות מפוזרות לאורך ה־tRNA, כולל באזור ה־anticodon וב־wobble position.

דוגמאות שהוזכרו:

מודיפיקציה מאפיין
Pseudouridine (Ψ) שינוי של uridine, מופיע גם ב־rRNA וב־tRNA
m²G מתילציות על guanosine
s⁴U החלפת חמצן בגופרית על uridine
2′-O-methylribose מתילציה על הריבוז
Dihydrouridine (D) שינוי של uridine, אופייני ל־D-loop
Inosine (I) נוצר מדה־אמינציה של adenosine, נפוץ באזור ה־wobble של האנטיקודון

Inosine חשוב במיוחד לקריאת קודונים. הוא נוצר כאשר אדנוזין עובר דה־אמינציה, כלומר הסרת קבוצת אמינו והחלפה שלה בחמצן. שינוי כזה מאפשר ל־tRNA לקרוא יותר מאפשרות אחת בקודון, בעיקר בעמדת wobble.

דור פסקל